Пралін (%)

2.43

1,65

1,98

0,73

1,88

1,81

2.43

2.2 Стандартныя рэчывы, якія выкарыстоўваюцца ў калібровачнай крывой размеркавання адноснай малекулярнай масы: інсулін, мікапептыды, гліцын-гліцын-тыразін-аргінін, гліцын-гліцын-гліцын

3 Прыборы і абсталяванне

23.2

21.4

22.2

16.1

22.3

20,8

0,93

23,9

27,5

У цэлым, доля амінакіслот у прадуктах Sustar вышэйшая, чым у прадуктах Zinpro.

Частка 8. Эфекты ўжывання

Уплыў розных крыніц мікраэлементаў на прадукцыйнасць і якасць яек курэй-несушак у познім перыядзе несучасці

2.40

Вытворчы працэс

1,68

Тэхналогія мэтанакіраванага хелявання

Тэхналогія эмульсіфікацыі зрухам

Тэхналогія распылення і сушкі пад ціскам

2.42

Тэхналогія халадзільнага абсталявання і асушвання паветра

1,68

Перадавая тэхналогія кантролю навакольнага асяроддзя

Дадатак А: Метады вызначэння адноснага малекулярна-маснага размеркавання пептыдаў

Прыняцце стандарту: GB/T 22492-2008

1 Прынцып выпрабавання:

Яна была вызначана метадам высокаэфектыўнай гель-фільтрацыйнай храматаграфіі. Гэта значыць, з выкарыстаннем порыстага напаўняльніка ў якасці стацыянарнай фазы, на падставе розніцы ў адносных малекулярных масах кампанентаў узору для падзелу, выяўленых пры пептыднай сувязі ў ультрафіялетавай даўжыні хвалі паглынання 220 нм, з выкарыстаннем спецыяльнага праграмнага забеспячэння для апрацоўкі дадзеных для вызначэння размеркавання адноснай малекулярнай масы метадам гель-фільтрацыйнай храматаграфіі (г.зн. праграмнага забеспячэння GPC), храматаграмы і іх дадзеныя былі апрацаваны, каб атрымаць памер адноснай малекулярнай масы соевага пептыду і дыяпазон размеркавання.

2. Рэагенты

Эксперыментальная вада павінна адпавядаць спецыфікацыям другаснай вады ў GB/T6682, выкарыстанне рэагентаў, за выключэннем спецыяльных палажэнняў, павінна быць аналітычна чыстым.

2.1 Рэагенты ўключаюць ацэтанітрыл (храматаграфічна чысты), трыфторацэтавую кіслату (храматаграфічна чыстую),

2.2 Стандартныя рэчывы, якія выкарыстоўваюцца ў калібровачнай крывой размеркавання адноснай малекулярнай масы: інсулін, мікапептыды, гліцын-гліцын-тыразін-аргінін, гліцын-гліцын-гліцын

3 Прыборы і абсталяванне

3.1 Высокаэфектыўная вадкасная храматографія (ВЭЖХ): храматаграфічная рабочая станцыя або інтэгратар з УФ-дэтэктарам і праграмным забеспячэннем для апрацоўкі дадзеных ГПХ.

3.2 Блок вакуумнай фільтрацыі і дэгазацыі мабільнай фазы.

3.3 Электронныя вагі: градуіроўка 0,000 1 г.

4 этапы эксплуатацыі

4 этапы эксплуатацыі
0,45

4.1 Храматаграфічныя ўмовы і эксперыменты па адаптацыі сістэмы (эталонныя ўмовы)

  • 4.1.1 Храматаграфічная калонка: TSKgelG2000swxl300 мм × 7,8 мм (унутраны дыяметр) або іншыя гелевыя калонкі таго ж тыпу з падобнымі характарыстыкамі, прыдатныя для вызначэння бялкоў і пептыдаў.
  • 4.1.2 Рухомая фаза: ацэтанітрыл + вада + трыфторацэтавая кіслата = 20 + 80 + 0,1.
  • 4.1.3 Даўжыня хвалі дэтэктавання: 220 нм.
  • 4.1.4 Хуткасць патоку: 0,5 мл/мін.
  • 4.1.5 Час выяўлення: 30 хвілін.
  • 4.1.6 Аб'ём уводу пробы: 20 мкл.
  • 4.1.7 Тэмпература калонкі: пакаёвая тэмпература.
  • 4.1.8 Каб храматаграфічная сістэма адпавядала патрабаванням да выяўлення, было агаворана, што пры вышэйзгаданых храматаграфічных умовах эфектыўнасць гель-храматаграфічнай калонкі, г.зн. тэарэтычная колькасць пласцін (N), павінна быць не меншай за 10000, разлічаная на аснове пікаў трыпептыднага стандарту (гліцын-гліцын-гліцын).
  • 4.2 Пабудова стандартных крывых адноснай малекулярнай масы
  • Вышэйзгаданыя розныя стандартныя растворы пептыдаў з адноснай малекулярнай масай і масавай канцэнтрацыяй 1 мг/мл былі падрыхтаваны метадам супастаўлення рухомай фазы, змяшаны ў пэўнай прапорцыі, а затым фільтраваны праз мембрану арганічнай фазы з памерам пор 0,2 мкм ~ 0,5 мкм і ўведзены ў пробу, пасля чаго былі атрыманы храматаграмы стандартаў. Калібровачныя крывыя адноснай малекулярнай масы і іх ураўненні былі атрыманы шляхам пабудовы лагарыфма адноснай малекулярнай масы ў залежнасці ад часу ўтрымання або метадам лінейнай рэгрэсіі.

4.3 Апрацоўка ўзораў

0,29

Дакладна ўзважце 10 мг узору ў мерную колбу аб'ёмам 10 мл, дадайце невялікую колькасць рухомай фазы, падтрасайце ультрагукам на працягу 10 хвілін, каб узор цалкам растварыўся і змяшаўся, развядзіце рухомай фазай да адзнакі, а затым фільтруйце праз мембрану арганічнай фазы з памерам пор 0,2 мкм ~ 0,5 мкм, і фільтрат аналізуйце ў адпаведнасці з храматаграфічнымі ўмовамі, апісанымі ў А.4.1.

  • 5. Разлік размеркавання адноснай малекулярнай масы
  • Пасля аналізу раствора ўзору, падрыхтаванага ў 4.3, у храматаграфічных умовах 4.1, адносную малекулярную масу ўзору і яго дыяпазон размеркавання можна атрымаць, падставіўшы храматаграфічныя дадзеныя ўзору ў калібровачную крывую 4.2 з дапамогай праграмнага забеспячэння для апрацоўкі дадзеных ГПХ. Размеркаванне адносных малекулярных мас розных пептыдаў можна разлічыць метадам нармалізацыі плошчы піка па формуле: X = A / A агульная × 100
  • У формуле: X - масавая доля пептыду адноснай малекулярнай масы ў агульным пептыдзе ў пробе, %;
  • A - Плошча піка пептыда з адноснай малекулярнай масай;
  • Агульная А — сума плошчаў пікаў кожнага пептыда з адноснай малекулярнай масай, разлічаная да аднаго знака пасля коскі.
  • 6 Паўтаральнасць
  • Абсалютная розніца паміж двума незалежнымі вызначэннямі, атрыманымі ва ўмовах паўтаральнасці, не павінна перавышаць 15% ад сярэдняга арыфметычнага двух вызначэнняў.
  • Дадатак B: Метады вызначэння свабодных амінакіслот
  • Прыняцце стандарту: Q/320205 KAVN05-2016
  • 1.2 Рэагенты і матэрыялы
  • Ледзяная воцатная кіслата: аналітычна чыстая
  • Хлорная кіслата: 0,0500 моль/л
  • Індыкатар: 0,1% крышталічны фіялетавы індыкатар (ледзяная воцатная кіслата)
  • 2. Вызначэнне свабодных амінакіслот

Узоры сушылі пры тэмпературы 80°C на працягу 1 гадзіны.

Змесціце ўзор у сухі кантэйнер для натуральнага астывання да пакаёвай тэмпературы або астудзіце да прыдатнай для выкарыстання тэмпературы.Узважце прыблізна 0,1 г узору (з дакладнасцю да 0,001 г) у сухую канічную колбу аб'ёмам 250 мл.Хутка перайдзіце да наступнага кроку, каб пазбегнуць паглынання ўзорам навакольнай вільгаціДадайце 25 мл ледзяной воцатнай кіслаты і добра змяшайце не больш за 5 хвілін.Дадайце 2 кроплі індыкатара крышталічнага фіялетавагаТытруйце стандартным растворам хлорнай кіслаты з канцэнтрацыяй 0,0500 моль/л (±0,001), пакуль раствор не зменіць колер з фіялетавага на канчатковую кропку.

Запішыце аб'ём спажыванага стандартнага раствора.

  • Правядзіце холастую пробу адначасова.
  • 3. Разлік і вынікі
  • Змест свабодных амінакіслот X у рэактыве выражаецца ў выглядзе масавай долі (%) і разлічваецца па формуле: X = C × (V1-V0) × 0,1445/M × 100%, па формуле:
  • C - Канцэнтрацыя стандартнага раствора хлорнай кіслаты ў молях на літр (моль/л)
  • V1 - Аб'ём, выкарыстаны для тытравання ўзораў стандартным растворам хлорнай кіслаты, у мілілітрах (мл).
  • Vo - аб'ём, выкарыстаны для тытравання стандартным растворам хлорнай кіслаты, у мілілітрах (мл);

M - маса ўзору, у грамах (г).

0,1445: Сярэдняя маса амінакіслот, эквівалентная 1,00 мл стандартнага раствора хлорнай кіслаты [c (HClO4) = 1,000 моль/л]. 4.2.3 Стандартны тытравальны раствор сульфату цэрыя: канцэнтрацыя c [Ce(SO4)2] = 0,1 моль/л, падрыхтаваны ў адпаведнасці з GB/T601.
Прыняцце стандартаў: Q/70920556 71-2024 1. Прынцып вызначэння (на прыкладзе Fe) Комплексы жалеза на аснове амінакіслот маюць вельмі нізкую растваральнасць у бязводным этаноле, а свабодныя іёны металаў раствараюцца ў бязводным этаноле, розніца ў растваральнасці паміж імі ў бязводным этаноле была выкарыстана для вызначэння хуткасці хелатавання комплексаў жалеза на аснове амінакіслот.
У формуле: V1 — аб'ём стандартнага раствора сульфату цэрыя, выдаткаваны на тытраванне выпрабавальнага раствора, мл; Бязводны этанол; астатняе аналагічна пункту 4.5.2 у GB/T 27983-2011. 3. Этапы аналізу
Правядзіце дзве паралельныя спробы. Узважце 0,1 г узору, высушанага пры тэмпературы 103 ± 2 ℃ на працягу 1 гадзіны з дакладнасцю да 0,0001 г, дадайце 100 мл бязводнага этанолу для растварэння, адфільтруйце, рэшту фільтра прамыйце 100 мл бязводнага этанолу не менш за тры разы, затым перанясіце рэшту ў канічную колбу аб'ёмам 250 мл, дадайце 10 мл раствора сернай кіслаты ў адпаведнасці з пунктам 4.5.3 у GB/T27983-2011, а затым выканайце наступныя дзеянні ў адпаведнасці з пунктам 4.5.3 «Нагрэйце да растварэння, а затым дайце астыць» у GB/T27983-2011. Адначасова правядзіце холастую пробу. 4. Вызначэнне агульнага ўтрымання жалеза 4.1 Прынцып вызначэння такі ж, як і ў пункце 4.4.1 у GB/T 21996-2008.

4.2. Рэагенты і растворы

4.2.1 Змяшаная кіслата: Дадайце 150 мл сернай кіслаты і 150 мл фосфарнай кіслаты да 700 мл вады і добра змяшайце. 4.2.2 Індыкатарны раствор дыфеніламінсульфаната натрыю: 5 г/л, падрыхтаваны ў адпаведнасці з GB/T603. 4.2.3 Стандартны тытравальны раствор сульфату цэрыя: канцэнтрацыя c [Ce(SO4)2] = 0,1 моль/л, падрыхтаваны ў адпаведнасці з GB/T601.
4.3 Этапы аналізу Правядзіце дзве спробы паралельна. Узважце 0,1 г узору з дакладнасцю да 0,20001 г, змясціце ў канічную колбу аб'ёмам 250 мл, дадайце 10 мл змяшанай кіслаты, пасля растварэння дадайце 30 мл вады і 4 кроплі раствора індыкатара дыянілінсульфаната натрыю, а затым выканайце наступныя дзеянні ў адпаведнасці з пунктам 4.4.2 у GB/T21996-2008. Адначасова правядзіце холастую пробу. 4.4 Прадстаўленне вынікаў Агульны ўтрыманне жалеза X1 у жалезападобных комплексах амінакіслот, выражанае ў масавай долі жалеза, значэнне, выражанае ў %, разлічвалі па формуле (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 V0 — расход стандартнага раствора сульфату цэрыя на тытраванне халастога раствора, мл; V0 — расход стандартнага раствора сульфату цэрыя на тытраванне халастога раствора, мл; C - Фактычная канцэнтрацыя стандартнага раствора сульфату цэрыя, моль/л5. Разлік утрымання жалеза ў хелатахЗмест жалеза X2 у хелаце ў пераліку на масавую долю жалеза, значэнне, выражанае ў %, разлічвалася па формуле: x2 = ((V1-V2) × C × 0,05585)/м1 × 100
У формуле: V1 — аб'ём стандартнага раствора сульфату цэрыя, выдаткаваны на тытраванне выпрабавальнага раствора, мл; V2 — расход стандартнага раствора сульфату цэрыя на тытраванне халастога раствора, мл;nom1 — маса ўзору, г. За вынік вызначэння прымаюць сярэдняе арыфметычнае значэнне вынікаў паралельнага вызначэння, прычым абсалютная розніца вынікаў паралельнага вызначэння не перавышае 0,3%. 0,05585 - маса двухвалентнага жалеза, выражаная ў грамах, эквівалентная 1,00 мл стандартнага раствора сульфату цэрыя C[Ce(SO4)2.4H20] = 1,000 моль/л.nom1 — маса ўзору, г. За вынік вызначэння прымаюць сярэдняе арыфметычнае значэнне вынікаў паралельнага вызначэння, прычым абсалютная розніца вынікаў паралельнага вызначэння не перавышае 0,3%. 6. Разлік хуткасці хелатаванняХуткасць хелатавання X3, значэнне, выражанае ў %, X3 = X2/X1 × 100Дадатак C: Метады вызначэння хуткасці хелатавання Zinpro

Прыняцце стандарту: Q/320205 KAVNO7-2016

1. Рэагенты і матэрыялы

а) Ледзяная воцатная кіслата: аналітычна чыстая; б) Хлорная кіслата: 0,0500 моль/л; в) Індыкатар: 0,1% крышталічны фіялетавы індыкатар (ледзяная воцатная кіслата)

2. Вызначэнне свабодных амінакіслот

2.1 Узоры сушылі пры тэмпературы 80°C на працягу 1 гадзіны.

2.2 Змесціце ўзор у сухі кантэйнер для натуральнага астывання да пакаёвай тэмпературы або астудзіце да прыдатнай для выкарыстання тэмпературы.

2.3 У сухую канічную колбу аб'ёмам 250 мл адважце прыблізна 0,1 г узору (з дакладнасцю да 0,001 г).

2.4 Хутка перайдзіце да наступнага кроку, каб пазбегнуць паглынання ўзорам навакольнай вільгаці.

2.5 Дадайце 25 мл ледзяной воцатнай кіслаты і добра змяшайце не больш за 5 хвілін.

2.5 Дадайце 25 мл ледзяной воцатнай кіслаты і добра змяшайце не больш за 5 хвілін.

0,00

2.6 Дадайце 2 кроплі індыкатара крышталічнага фіялетавага.

0,00

2.7 Тытруйце стандартным растворам перхларыднай кіслаты з канцэнтрацыяй 0,0500 моль/л (±0,001) да змены колеру раствора з фіялетавага на зялёны на працягу 15 секунд без змены колеру ў канцы тытравання.

0,00

2.8 Запішыце аб'ём спажыванага стандартнага раствора.

2.5 Дадайце 25 мл ледзяной воцатнай кіслаты і добра змяшайце не больш за 5 хвілін.
0,09

2.9 Правядзіце холастую пробу адначасова.

  • 3. Разлік і вынікі
  • Каталонская
  • Physicochemical parameters

V1 - Аб'ём, выкарыстаны для тытравання ўзораў стандартным растворам хлорнай кіслаты, у мілілітрах (мл).

Vo - аб'ём, выкарыстаны для тытравання стандартным растворам хлорнай кіслаты, у мілілітрах (мл);

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

Адрас: № 147, вуліца Цінпу, горад Шоуань, павет Пуцзян, горад Чэнду, правінцыя Сычуань, Кітай

Цыстынол (%)

Тэлефон: 86-18880477902

Прадукты

0,00

Неарганічныя мікраэлементы

  • Арганічныя мікраэлементы
  • Суахілі
  • Індывідуальны сэрвіс
  • Хуткія спасылкі

Профіль кампаніі

Application object Suggested dosage (g/t full-value material) Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
Гуджараці Націсніце для запыту © Аўтарскае права - 2010-2025: Усе правы абаронены. Мапа сайта

ТОП ПОШУКУ

Тэлефон

Тэл. 86-18880477902 Яванская Электронная пошта

WhatsApp

8618880477902 Кітайская Французская
Bird Кітайская Французская Нямецкая

Іспанская

Aquatic animals Японская Карэйская Арабская

Грэчаская

Турэцкая Італьянская
Ruminant animal g/head day January 0.75   Інданезійская

Афрыкаанс

Шведская

0,00
0,09

Польская

  • Баскская
  • Каталонская
  • Physicochemical parameters

Хіндзі

Лао

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

Шона

Балгарская

  • Себуанская
  • This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
  • The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
  • Харвацкая

галандская

Application object Урду

В'етнамская

Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
Гуджараці гаіцянскі Хаўса Кіньяруанда

Хмонг

Венгерская

Piglets and fattening pigs Ігба Яванская Каннада

Кхмерская

Курдская

Кыргызская Лацінская
Bird 300~400 45~60 Македонская

Малайская

Малаялам

Aquatic animals 200~300 30~45 1. Promote growth, improve feed conversion;

2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality.

0,00
0,09

Нарвежская

  • Пушту
  • Appearance: brownish-yellow granules
  • Physicochemical parameters

Сербская

Сесото

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

Шона

Сіндхі

This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;

Суахілі

Таджыкская

Тамільская

Тэлугу

Тайская

Application object Урду

В'етнамская

Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
Ідыш Ёруба Зулу Кіньяруанда

Орыя

Туркменскі

Уйгурская 250~400 37.5~60 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality;

2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion;

3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality.

Bird 300~400 45~60 1. Improve feather glossiness;

2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk;

3. Improve anti-stress ability and reduce mortality;

4. Improve feed conversion and increase growth rate.

Aquatic animals January 300 45 1. Promote growth, improve feed conversion;

2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality.

Ruminant animal g/head day 2.4   1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk;

2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality.

0,00
0,09

4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade

  • Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
  • Appearance: brownish-yellow granules
  • Physicochemical parameters

a) Mn: ≥ 10.0%

b) Total amino acids: ≥ 19.5%

c) Chelation rate: ≥ 95%

d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg

e) Lead: ≤ 5 mg/kg

f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg

g) Moisture content: ≤ 5.0%

h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh

n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides

Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade

This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;

This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;

The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;

The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;

Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.

Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade

Application object Suggested dosage (g/t full-value material) Content in full-value feed (mg/kg) Efficacy
Breeding pig 200~300 30~45 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility;

2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles.

Piglets and fattening pigs 100~250 15~37.5 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance;

2. Promote growth and improve feed conversion significantly;

3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage.

Bird 250~350 37.5~52.5 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality;

2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate;

3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases.

Aquatic animals 100~200 15~30 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance;

2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs.

Ruminant animal g/head day Cattle 1.25   1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage;

2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs,

and increase the newborn weight of young animals.

Goat 0.25  

Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates

0,00
S/N F: Functional attributes A: Competitive differences B: Benefits brought by competitive differences to users
1,52 Selectivity control of raw materials Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides High biological safety, avoiding cannibalism
2 Directional digestion technology for double protein biological enzyme High proportion of small molecular peptides More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability
3 Advanced pressure spray & drying technology Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed
Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations Improve the stability of feed products
4 Advanced production control technology Totally enclosed process, high degree of automatic control Safe and stable quality
5 Advanced quality control technology Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency

Part 7 Competitor Comparison

Standard VS Standard

Валін (%)
1.14
1.14

Comparison of peptide distribution and chelation rate of products

Sustar's products Proportion of small peptides(180-500) Zinpro's products Proportion of small peptides(180-500)
AA-Cu ≥74% AVAILA-Cu 78%
AA-Fe ≥48% AVAILA-Fe 59%
AA-Mn ≥33% AVAILA-Mn 53%
AA-Zn ≥37% AVAILA-Zn 56%

 

Sustar's products Chelation rate Zinpro's products Chelation rate
AA-Cu 94.8% AVAILA-Cu 94.8%
AA-Fe 95.3% AVAILA-Fe 93.5%
AA-Mn 94.6% AVAILA-Mn 94.6%
AA-Zn 97.7% AVAILA-Zn 90.6%

The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.

Comparison of the content of 17 amino acids in different products

Name of

amino acids

Sustar's Copper

Amino Acid Chelate

Feed Grade

Zinpro's

AVAILA

copper

Sustar's Ferrous Amino Acid C

helate Feed

Grade

Zinpro's AVAILA

iron

Sustar's Manganese

Amino Acid Chelate

Feed Grade

Zinpro's AVAILA

manganese

Sustar's Zinc

Amino Acid

Chelate Feed Grade

Zinpro's AVAILA

zinc

aspartic acid (%) 1.88 0.72 1.50 0.56 1.78 1.47 1.80 2.09
glutamic acid (%) 4.08 6.03 4.23 5.52 4.22 5.01 4.35 3.19
Serine (%) 0.86 0.41 1.08 0.19 1.05 0.91 1.03 2.81
Histidine (%) 0.56 0.00 0.68 0.13 0.64 0.42 0.61 0.00
Glycine (%) 1.96 4.07 1.34 2.49 1.21 0.55 1.32 2.69
Threonine (%) 0.81 0.00 1.16 0.00 0.88 0.59 1.24 1.11
Arginine (%) 1.05 0.78 1.05 0.29 1.43 0.54 1.20 1.89
Alanine (%) 2.85 1.52 2.33 0.93 2.40 1.74 2.42 1.68
Tyrosinase (%) 0.45 0.29 0.47 0.28 0.58 0.65 0.60 0.66
Cystinol (%) 0.00 0.00 0.09 0.00 0.11 0.00 0.09 0.00
Valine (%) 1.45 1.14 1.31 0.42 1.20 1.03 1.32 2.62
Methionine (%) 0.35 0.27 0.72 0.65 0.67 0.43 January 0.75 0.44
Phenylalanine (%) 0.79 0.41 0.82 0.56 0.70 1.22 0.86 1.37
Isoleucine (%) 0.87 0.55 0.83 0.33 0.86 0.83 0.87 1.32
Leucine (%) 2.16 0.90 2.00 1.43 1.84 3.29 2.19 2.20
Lysine (%) 0.67 2.67 0.62 1.65 0.81 0.29 0.79 0.62
Proline (%) 2.43 1.65 1.98 0.73 1.88 1.81 2.43 2.78
Total amino acids (%) 23.2 21.4 22.2 16.1 22.3 20.8 23.9 27.5

Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.

Part 8 Effects of use

Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period

1.31

Production Process

Production Process
  • Targeted chelation technology
  • Shear emulsification technology
  • Pressure spray & drying technology
  • Refrigeration & dehumidification technology
  • Advanced environmental control technology

Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides

Adoption of standard: GB/T 22492-2008

1 Test Principle:

It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.

2. Reagents

The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.

2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),

2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine

3 Instrument and equipment

3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.

3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.

3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.

4 Operating steps

4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)

4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.

4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.

4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.

4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.

4.1.5 Detection time: 30 min.

4.1.6 Sample injection volume: 20μL.

4.1.7 Column temperature: room temperature.

4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).

4.2 Production of relative molecular mass standard curves

The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.

4.3 Sample treatment

Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.

5. Calculation of relative molecular mass distribution

After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100

In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;

A - Peak area of a relative molecular mass peptide;

Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.

6 Repeatability

The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.

Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids

Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016

1.2 Reagents and materials

Glacial acetic acid: analytically pure

Perchloric acid: 0.0500 mol/L

Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)

2. Determination of free amino acids

The samples were dried at 80°C for 1 hour.

Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.

Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.

Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture

Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.

Add 2 drops of crystal violet indicator

Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.

Record the volume of standard solution consumed.

Carry out the blank test at the same time.

3. Calculation and results

The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:

C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)

V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).

Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);

M - Mass of the sample, in grams (g ).

0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].

Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate

Adoption of standards: Q/70920556 71-2024

1. Determination principle (Fe as an example)

Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.

2. Reagents & Solutions

Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.

3. Steps of analysis

Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.

4. Determination of total iron content

4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.

4.2. Reagents & Solutions

4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.

4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.

4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.

4.3 Steps of analysis

Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.

4.4 Representation of results

The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):

X1=(V-V0)×C×M×10-3×100

In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;

V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;

C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L

5. Calculation of iron content in chelates

The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100

In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;

V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;

C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;

0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.

m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.

6. Calculation of chelation rate

Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100

Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate

Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016

1. Reagents and materials

a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)

2. Determination of free amino acids

2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.

2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.

2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask

2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.

2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.

2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.

2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.

2.8 Record the volume of standard solution consumed.

2.9 Carry out the blank test at the same time.

3. Calculation and results

The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)

In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)

V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).

Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);

M - Mass of the sample, in grams (g ).

0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].

4. Calculation of chelation rate

The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.


Post time: Sep-17-2025